Библиография

1. 1. Берг Л.С. 1948. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран. Т. 1. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 466 с.
2. 2. Волков А.В. 2012. Методы диагностики микрои наноструктур (электронный ресурс). Научно-образовательный модуль в системе дистанционного обучения MOODLE. Самара: Изд-во СГАУ, 98 c. (https://goo.su/CYZl. Version 04/2025).
3. 3. Гецевичюте С. 1974. Паразитофауна речной миноги (Lampetra fluviatilis) залива Куршю-Марес // Acta Parasitol. Litu. Т. 12. С. 59–62.
4. 4. Дементьев Г.П., Гладков Н.А., Спангенберг Е.П. 1951. Птицы Советского Союза. Т. 3. М.: Совет. наука, 680 с.
5. 5. Дементьев Г.П., Гладков Н.А., Исаков Ю.А. и др. 1952. Птицы Советского Союза. Т. 4. М.: Совет. наука, 640 с.
6. 6. Евсеева Н.В. 2007. Паразитофауна европейской речной миноги Lampetra fluviatilis (L.) Онежского озера // Паразитология. Т. 41. № 4. С. 317–321.
7. 7. Звездин А.О., Павлов Д.С., Кучерявый А.В., Цимбалов И.А. 2017. Экспериментальное изучение миграционного поведения речной миноги Lampetra fluviatilis (L.) в период первичного расселения молоди // Биология внутр. вод. № 2. С. 94–103. https://doi.org/10.7868/S032096521702019X
8. 8. Иванов А.В., Полянский Ю.И., Стрелков А.А. 1981. Большой практикум по зоологии беспозвоночных. Простейшие, губки, кишечнополостные, гребневики, плоские черви, немертины, круглые черви. М.: Высш. шк., 504 с.
9. 9. Кудерский Л.А. 2007. Речная минога (Lampetra fluviatilis [Linnaeus, 1758]) восточной части Финского залива Балтийского моря // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ. Вып. 337. С. 307–360.
10. 10. Кулаков Д.В., Кутерницкая Е.А. 2021. Орнитофауна посёлка Рощино (Карельский перешеек, Ленинградская область) // Рус. орнитол. журн. Т. 30. № 2094. С. 3455–3479.
11. 11. Кучерявый А.В., Цимбалов И.А., Костин В.В. и др. 2016. Полиморфизм производителей жилой формы речной миноги Lampetra fluviatilis (Petromyzontidae) // Вопр. ихтиологии. Т. 56. № 5. С. 577–585. https://doi.org/10.7868/S0042875216050076
12. 12. Мальчевский А.С., Пукинский Ю.Б. 2021. Птицы Ленинградской области // Рус. орнитол. журн. Т. 30. № 2100. С. 3713–3797.
13. 13. Махров А.А., Попов И.Ю. 2015. Жизненные формы миног (Petromyzontidae) как проявление внутривидового разнообразия онтогенеза // Онтогенез. Т. 46. № 4. С. 240–251. https://doi.org/10.7868/S0475145015040072
14. 14. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресных водоемах. 1983. Зообентос и его продукция. Л.: Изд-во ГосНИОРХ, 51 c.
15. 15. Определитель зоопланктона и зообентоса пресных вод Европейской России. 2016. Т. 2. Зообентос. М.: Т-во науч. изд. КМК, 480 с.
16. 16. Павлов Д.С., Назаров Д.Ю., Звездин А.О., Кучерявый А.В. 2014. Покатная миграция ранних личинок европейской речной миноги Lampetra fluviatilis // Докл. РАН. Т. 459. № 2. С. 248–251. https://doi.org/10.7868/S0869565214320231
17. 17. Павлов Д.С., Звездин А.О., Костин В.В. и др. 2017. Временная характеристика покатной миграции смолтов речной миноги в реке Черной // Изв. РАН. Сер. биол. № 3. С. 276–282. https://doi.org/10.7868/S0002332917030067
18. 18. Подвязная И.М. 1999. Тонкое строение покровов церкарий и развивающихся метацеркарий Diplostomum chromatophorum (Trematoda: Diplostomidae) // Паразитология. Т. 33. № 6. С. 507–519.
19. 19. Полякова Н.В., Кучерявый А.В., Павлов Д.С., Цимбалов И.А. 2019. Особенности питания пескороек речной миноги Lampetra fluviatilis из реки Чёрная (бассейн Балтийского моря) // Вопр. ихтиологии. Т. 59. № 2. С. 186–194. https://doi.org/10.1134/S0042875219020206
20. 20. Полякова Н.В., Кучерявый А.В., Звездин А.О., Колотей А.В. 2022. Исследование миног рода Eudontomyzon, их местообитаний и сообществ в национальном парке “Смоленское поозерье” // Сб. матер. Всерос. науч.-практ. конф. “Актуальные проблемы зоологии России и сопредельных территорий”. Ульяновск: Изд-во УлГПУ. С. 326–331.
21. 21. Полякова Н.В., Кучерявый А.В., Генельт-Яновская А.С. и др. 2024. Характеристика типичных местообитаний личинок речной миноги Lampetra fluviatilis (Petromyzontidae) // Биология внутр. вод. Т. 17. № 5. С. 763–775. https://doi.org/10.31857/S0320965224050071
22. 22. Тиунова А.Е. 2025. Гибрид кряквы Anas platyrhynchos и шилохвости Anas acuta в Санкт-Петербурге // Рус. орнитол. журн. Т. 34. № 2497. С. 526–528.
23. 23. Шигин А.А. 1976. Метацеркарии рода Diplostomum фауны СССР // Паразитология. Т. 10. № 4. С. 346–351.
24. 24. Шигин А.А. 1986. Трематоды фауны СССР. Род Diplostomum. Метацеркарии. М.: Наука, 253 с.
25. 25. Шигин А.А. 1993. Трематоды фауны России и сопредельных регионов. Род Diplostomum. Мариты. М.: Наука, 208 с.
26. 26. Шилин Н.И. 2017. Об изменениях в таксономии ряда круглоротых и рыб из списка Изумрудной сети // Вестн. ТвГУ. Сер. биология и экология. № 2. С. 158–162.
27. 27. Шульман С.С. 1957. Материалы по паразитофауне миног бассейнов Балтийского и Белого морей // Изв. ВНИОРХ. Т. 42. С. 287–303.
28. 28. Юрчак М.И., Полякова Н.В. 2019. Сезонные изменения макрозообентоса реки Чёрная (Ленинградская область) // Экол. сб. 7. Труды молодых ученых. Тольятти: Изд-во ИЭВБ РАН; Анна. С. 527–529. https://doi.org/10.24411/9999-010A-2019-10133
29. 29. Achatz T.J., Martens J.R., Kostadinova A. et al. 2022. Molecular phylogeny of Diplostomum, Tylodelphys, Austro­diplostomum and Paralaria (Digenea: Diplostomidae) necessitates systematic changes and reveals a history of evolutionary host switching events // Int. J. Parasitol. V. 52. № 1. P. 47–63. https://doi.org/10.1016/j.ijpara.2021.06.002
30. 30. Ampullaceana balthica (Linnaeus, 1758) in GBIF Secretariat. 2023. GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset https://doi.org/10.15468/39omei (https://www.gbif.org/species/9991201. Version 03/2025).
31. 31. Barber I., Crompton D.W.T. 1997. The distribution of the metacercariae of Diplostomum phoxini in the brain of minnows, Phoxinus phoxinus // Folia Parasitol. V. 44. № 1. P. 19–25.
32. 32. Beamish F.W.H., Austin L.S. 1985. Growth of the mountain brook lamprey Ichthyomyzon greeleyi Hubbs and Trautman // Copeia. V. 1985. № 4. P. 881–890. https://doi.org/10.2307/1445237
33. 33. Bergstedt R.A., Swink W.D. 1995. Seasonal growth and duration of the parasitic life stage of the landlocked sea lamprey (Petromyzon marinus) // Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 52. № 6. P. 1257–1264. https://doi.org/10.1139/f95-122
34. 34. Bibby M.C., Rees G. 1971. The ultrastructure of the epidermis and associated structures in the metacercaria, cercaria and sporocyst of Diplostomum phoxini (Faust, 1918) // Z. Parasitenk. V. 37. № 3. P. 169–186. https://doi.org/10.1007/BF00259497
35. 35. Bird D.J., Potter I.C. 1979. Metamorphosis in the paired species of lampreys, Lampetra fluviatilis (L.) and Lampetra planeri (Bloch). 1. A description of the timing and stages // Zool. J. Linn. Soc. V. 65. № 2. P. 127–143. https://doi.org/10.1111/j.1096-3642.1979.tb01086.x
36. 36. Blasco-Costa I., Koehler A.V., Martin A., Poulin R. 2013. Upstream-downstream gradient in infection levels by fish parasites: a common river pattern? // Parasitology. V. 140. № 2. P. 266–274. https://doi.org/10.1017/S0031182012001527
37. 37. Blasco-Costa I., Faltýnková A., Georgieva S. et al. 2014. Fish pathogens near the Arctic Circle: molecular, morphological and ecological evidence for unexpected diversity of Diplostomum (Digenea: Diplostomidae) in Iceland // Int. J. Parasitol. V. 44. № 10. P. 703–715. https://doi.org/10.1016/j.ijpara.2014.04.009
38. 38. Canty A., Ripley B.D. 2024. boot: Bootstrap Functions. R package version 1.3-31. https://doi.org/10.32614/CRAN.package.boot
39. 39. Dawson H.A., Quintella B.R., Almeida P.R. et al. 2015. The ecology of larval and metamorphosing lampreys // Lampreys: biology, conservation and control. Dordrecht: Springer. P. 75–137. https://doi.org/10.1007/978-94-017-9306-3_3
40. 40. Docker M. 2009. A review of the evolution of nonparasitism in lampreys and an update of the paired species concept // Am. Fish. Soc. Symp. V. 72. P. 71–114. https://doi.org/10.47886/9781934874134.ch4
41. 41. Dubuc R., Brocard F., Antri M. et al. 2008. Initiation of locomotion in lampreys // Brain Res. Rev. V. 57. № 1. P. 172–182. https://doi.org/10.1016/j.brainresrev.2007.07.016
42. 42. Fox J., Weisberg S. 2019. An R companion to applied regression. Thousand Oaks: Sage, 608 p.
43. 43. Goodwin C.E., Dick J.T.A., Rogowski D.L., Elwood R.W. 2008. Lamprey (Lampetra fluviatilis and Lampetra planeri) ammocoete habitat associations at regional, catchment and microhabitat scales in Northern Ireland // Ecol. Freshw. Fish. V. 17. № 4. P. 542–553. https://doi.org/10.1111/j.1600-0633.2008.00305.x
44. 44. Handbook of the birds of Europe, the Middle East, and North Africa: the birds of the Western Palearctic. 1977. V. 1. Ostrich to Ducks. Oxford: Oxford Univ. Press, 722 p.
45. 45. Hardisty M.W. 1961. The growth of larval lampreys // J. Anim. Ecol. V. 30. № 2. P. 357–371. https://doi.org/10.2307/2303
46. 46. Hardisty M.W. 2006. Lampreys: life without jaws. Tresaith: Forrest Text, 272 p.
47. 47. Hardisty M.W., Huggins R.J. 1970. Larval growth in the river lamprey, Lampetra fluviatilis // J. Zool. V. 161. № 2. P. 549–559. https://doi.org/10.1111/j.1469-7998.1970.tb02055.x
48. 48. Hardisty M.W., Potter I.C. 1971. The behaviour, ecology and growth of larval lampreys // The biology of lampreys. V. 1. London: Acad. Press. P. 85–125.
49. 49. Harrell F.E. Jr. 2025. Hmisc: Harrell miscellaneous. R package version 5.2-4 (https://github.com/harrelfe/hmisc. Version 04/2025).
50. 50. Helland-Riise S.H., Nadler L.E., Vindas M.A. et al. 2020. Regional distribution of a brain-encysting parasite provides insight on parasite-induced host behavioral manipulation // J. Parasitol. V. 106. № 1. P. 188–197. https://doi.org/10.1645/19-86
51. 51. Hothorn T., Hornik K., van de Wiel M.A., Zeileis A. 2008. Implementing a class of permutation tests: The coin package // J. Stat. Softw. V. 28. № 8. P. 1–23. https://doi.org/10.18637/jss.v028.i08
52. 52. Kirillova E., Kirillov P., Kucheryavyy A., Pavlov D. 2016. Common behavioral adaptations in lamprey and salmonids // Jawless fishes of the World. V. 2. Newcastle upon Tyne: Cambridge Scholars Publ. P. 196–213.
53. 53. Kivistik C., Käiro K., Tammert H. et al. 2022. Distinct stages of the intestinal bacterial community of Ampullaceana balthica after salinization // Front. Microbiol. V. 13. Article 767334. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.767334
54. 54. Kremnev G.A., Kryuchkova L.Y., Miroliubov A.A. et al. 2020. Micro-CT as a method to visualize intramolluscan stages of Digenea // Паразитология. V. 54. № 4. P. 312–321. https://doi.org/10.31857/S1234567806040045
55. 55. Kucheryavyy A., Tsimbalov I., Kirillova E. et al. 2016. The need for a new taxonomy for lampreys // Jawless fishes of the World. V. 1. Newcastle upon Tyne: Cambridge Scholars Publ. P. 251–277. https://doi.org/10.13140/RG.2.1.4515.9283
56. 56. Kucheryavyy A.V., Zvezdin A.O., Polyakova N.V., Pavlov D.S. 2022. A new element in the migration cycle of the European river lamprey Lampetra fluviatilis: downstream migration from a lake // Environ. Biol. Fish. V. 105. № 12. P. 1857–1871. https://doi.org/10.1007/s10641-022-01249-1
57. 57. Lebedeva D.I., Popov I.Y., Yakovleva G.A. et al. 2022. No strict host specificity: brain metacercariae Diplostomum petromyzifluviatilis Müller (Diesing, 1850) are conspecific with Diplostomum sp. Lineage 4 of Blasco-Costa et al. (2014) // Parasitol. Int. V. 91. Article 102654. https://doi.org/10.1016/j.parint.2022.102654
58. 58. Makhrov A.A., Kucheryavyy A.V., Savvaitova K.A. 2013. Review on parasitic and non-parasitic forms of the Arctic lamprey Lethenteron camtschaticum (Petromyzontiformes, Petromyzontidae) in the Eurasian Arctic // J. Ichthyol. V. 53. № 11. P. 944–958. https://doi.org/10.1134/S0032945213110064
59. 59. Methods for the study of marine benthos. 2013. Chichester: John Wiley and Sons, 502 p. https://doi.org/10.1002/9781118542392
60. 60. Moser M.L., Jackson A.D., Lucas M.C., Mueller R.P. 2015. Behavior and potential threats to survival of migrating lamprey ammocoetes and macrophthalmia // Rev. Fish Biol. Fish. V. 25. № 1. P. 103–116. https://doi.org/10.1007/s11160-014-9372-8
61. 61. Moser M.L., Hume J.B., Aronsuu K.K. et al. 2019. Lamprey reproduction and early life history: Insights from artificial propagation // Lampreys: biology, conservation and control. Dordrecht: Springer. P. 187–245. https://doi.org/10.1007/978-94-024-1684-8_2
62. 62. Nazarov D., Kucheryavyy A., Pavlov D. 2016. Distribution and habitat types of the lamprey larvae in rivers across Eurasia // Jawless fishes of the World. V. 1. Newcastle upon Tyne: Cambridge Scholars Publ. P. 280–298.
63. 63. Potter I.C. 1980. Ecology of larval and metamorphosing lampreys // Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 37. № 11. P. 1641–1657. https://doi.org/10.1139/f80-212
64. 64. Poulin R. 2000. Variation in the intraspecific relationship between fish length and intensity of parasitic infection: biological and statistical causes // J. Fish Biol. V. 56. № 1. P. 123–137. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.2000.tb02090.x
65. 65. R Core Team. 2023. R: A language and environment for statistical computing. Vienna, Austria: R Foundation for statistical computing (https://www.R-project.org. Version 12/2023).
66. 66. Radabaugh D.C. 1980. Changes in minnow, Pimephales promelas Rafinesque, schooling behaviour associated with infections of brainencysted larvae of the fluke, Ornithodiplostomum ptychocheilus // J. Fish Biol. V. 16. № 6. P. 621–628. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1980.tb03741.x
67. 67. Rendell-Bhatti F., Bull C., Cross R. et al. 2023. From the environment into the biomass: microplastic uptake in a protected lamprey species // Environ. Pollut. V. 323. Article 121267. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2023.121267
68. 68. Sakakibara I., Haramo E., Muto A. et al. 2014. Comparison of five exact confidence intervals for the binomial proportion // Cur. Res. Biostat. V. 4. № 1. P. 11–20. https://doi.org/10.3844/amjbsp.2014.11.20
69. 69. Schwelm J., Georgieva S., Grabner D. et al. 2021. Molecular and morphological characterisation of Diplostomum phoxini (Faust, 1918) with a revised classification and an updated nomenclature of the species-level lineages of Diplostomum (Digenea: Diplostomidae) sequenced worldwide // Parasitology. V. 148. № 13. P. 1648–1664. https://doi.org/10.1017/S0031182021001372
70. 70. Sweeting R.A. 1974. Investigations into natural and experimental infections of freshwater fish by the common eye-fluke Diplostomum spathaceum Rud. // Parasitology. V. 69. № 3. P. 291–300. https://doi.org/10.1017/s0031182000062995
71. 71. Sweeting R.A. 1976. An experimental demonstration of the life cycle of a Diplostomulum from Lampetra fluviatilis Linnaeus, 1758 // Z. Parasitenk. V. 49. № 3. P. 233–242. https://doi.org/10.1007/BF00380593
72. 72. Venables W.N., Ripley B.D. 2002. Modern applied statistics with S. N.Y.: Springer, 498 p. https://doi.org/10.1007/978-0-387-21706-2
73. 73. Williams M.O. 1966. Studies on the morphology and life-cycle of Diplostomum (Diplostomum) gasterostei (Strigeida: Trematoda) // Parasitology. V. 56. № 4. P. 693–706. https://doi.org/10.1017/s0031182000071717
74. 74. Zvezdin A.O., Kucheryavyy A.V., Pavlov D.S. 2022. The place and role of downstream migration of ammocoetes in the life cycle of the European river lamprey Lampetra fluviatilis (Petromyzontidae) // J. Ichthyol. V. 62. № 7. P. 1269–1283. https://doi.org/10.1134/S0032945222060352