Везде

ОБНВопросы ихтиологии Journal of Ichthyology

  • ISSN (Print) 0042-8752
  • ISSN (Online) 3034-5146

БИОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ, СОСТОЯНИЕ ГОНАД И УЛЬТРАСТРУКТУРА ГАМЕТ КРАСНОБРЮХОЙ КОЗОБОРОДКИ UPENEUS JAPONICUS (MULLIDAE) ЗАЛИВА НЯЧАНГ (ЦЕНТРАЛЬНЫЙ ВЬЕТНАМ)

Вы можете
Код статьи
S3034514625060064-1
DOI
10.7868/S3034514625060064
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Емельянова Н. Г.
  • Аффилиация: Московский государственный университет
Павлов Д. А.
  • Аффилиация: Московский государственный университет
Динь Й. Х. Т.
  • Аффилиация: Приморское отделение Совместного российско-вьетнамского тропического научно- исследовательского и технологического центра
Том/ Выпуск
Том 65 / Номер выпуска 6
Страницы
730-740
Аннотация
Приведены данные о биологических показателях рыб, состоянии гонад, ультраструктуре сперматозоидов и оболочек ооцитов краснобрюхой козобородки Upeneus japonicus зал. Нячанг. Самки крупнее самцов, зависимости их массы тела от длины значимо различаются. Размерный состав ооцитов самок в преднерестовом состоянии свидетельствует о непрерывном типе оогенеза. Порционная плодовитость составляет в среднем 3301 шт. Половой зрелости 50% самок достигают при длине тела по Смитту 104 мм. Яйцевая оболочка представлена однослойной zona radiata и узким хорионом. В овулировавших ооцитах толщина этих структур составляет соответственно 2.0—2.5 и 0.1—0.3 мкм. Головка сперматозоида имеет изгиб на апикальном заострённом конце. Среди остальных исследованных видов семейства Mullidae подобное строение сперматозоидов обнаружено у чернополосой козобородки U. tragula и U. heterospinus.
Ключевые слова
Upeneus japonicus порционная плодовитость ооциты сперматозоиды тип оогенеза ультраструктура половых клеток Центральный Вьетнам
Дата публикации
24.02.2026
Год выхода
2026
Всего подписок
0
Всего просмотров
2

Библиография

  1. 1. Емельянова Н.Г., Павлов Д.А. 2014. Ультраструктура гамет двух видов рода Upeneus (Mullidae) Южно-Китайского моря // Вопр. ихтиологии. Т. 54. № 3. С. 352–358. https://doi.org/10.7868/S0042875214030023
  2. 2. Емельянова Н.Г., Павлов Д.А. 2020. Морфология сперматозоидов рыб семейства Mullidae: Upeneus sulphureus // Вопр. ихтиологии. Т. 60. № 1. С. 74–81. https://doi.org/10.31857/S004287522001004X
  3. 3. Емельянова Н.Г., Павлов Д.А., Дин Тхи Хай Йен. 2024. Репродуктивные показатели и ультраструктура половых клеток Parupeneus heptacanthus (Mullidae) прибрежной зоны г. Нячанг (Вьетнам) // Вопр. ихтиологии. Т. 64. № 4. С. 480–490. https://doi.org/10.31857/S0042875224040111
  4. 4. Макеева А.П. 1992. Эмбриология рыб. М.: Изд-во МГУ, 216 с.
  5. 5. Маркевич А.И., Баланов А.А. 2012. Описание редкой для российских вод краснобрюхой козобородки Upeneus japonicus (Mullidae) // Вопр. ихтиологии. Т. 52. № 6. С. 718–722.
  6. 6. Овен Л.С. 2004. Специфика развития половых клеток морских рыб в период размножения как показатель типа нереста и реакции на условия среды обитания. М.: Изд-во ВНИРО, 186 с.
  7. 7. Павлов Д.А., Емельянова Н.Г. 2016. Особенности размножения Upeneus margarethae (Mullidae) — вида, впервые обнаруженного в прибрежной зоне Вьетнама // Вопр. ихтиологии. Т. 56. № 4. С. 474–486. https://doi.org/10.7868/S0042875216040135
  8. 8. Промысловые рыбы России. 2006. Т. 1. М.: Изд-во ВНИРО, 656 с.
  9. 9. Роскин Г.И., Левинсон Л.Б. 1957. Микроскопическая техника. М.: Сов. наука, 467 с.
  10. 10. Соколовский А.С., Соколовская Т.Г., Яковлев Ю.М. 2011. Рыбы залива Петра Великого. Владивосток: Дальнаука, 431 с.
  11. 11. Уикли Б. 1975. Электронная микроскопия для начинающих. М.: Мир, 324 с.
  12. 12. Berois N., Arezo M.J., Papa N.G. 2011. Gamete interactions in teleost fish: the egg envelope. Basic studies and perspectives as environmental biomonitor // Biol. Res. V. 44. № 2. P. 119–124. https://doi.org/10.4067/S0716-97602011000200002
  13. 13. Chen C.H., Wu C.C., Shao K.T., Yang J.S. 2007. Chorion microstructure for identifying five fish eggs of Apogonidae // J. Fish Biol. V. 71. № 3. P. 913–919. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.2007.01527.x
  14. 14. Chen L.-C., Hu C.-W., Weng J.-S. et al. 2024. Variations in the abundance, biodiversity, and assemblage structure of larval fish in the restricted waters of the Wang-an light fishery off Penghu, Taiwan // J. Mar. Sci. Eng. V. 12. № 8. Article 1434. https://doi.org/10.3390/jmse12081434
  15. 15. Cherif M., Zarrad R., Gharbi H. et al. 2007. Some biological parameters of the red mullet, Mullus barbatus L., 1758, from the Gulf of Tunis // Acta Adriat. V. 48. № 2. P. 131–144.
  16. 16. Choi S.J., Yun S.W., Park J.Y. 2023. Comparative morphology of the zona radiata in oocytes of Korean bitterlings from the genera Rhodeus, and Acheilognathus (Cyprinidae) // J. Ichthyol. V. 63. № 4. P. 781–787. https://doi.org/10.1134/S0032945223040021
  17. 17. Echreshavi S., Esmaeili H.R., Al Jufaili S.M. 2022. Goatfishes of the world: an updated list of taxonomy, distribution and conservation status (Teleostei: Mullidae) // Fish Taxa. V. 23. P. 1–29.
  18. 18. Fahmy A.F., El-Greisy Z.A., Moharram S.G. 2020. Impact of hormonal manipulation on egg quality of Diplodus sargus: comparative ultrastructural changes // AACL Bioflux. V. 13. № 5. P. 2664–2675.
  19. 19. Froese R., Pauly D. (Еds.). 2024. FishBase. World Wide Web electronic publication (www.fishbase.org. Version 10/2024).
  20. 20. Götting K.J. 1961. Beitrage zur Kenntnis der Grundlagen der Fortpflanzung und zur Fruchtbarkeits-bestimmung bei marinen Teleosteern // Helgoländ. Wiss. Meer. V. 8. № 1. P. 1–41. https://doi.org/10.1007/BF01609945
  21. 21. Horikawa H., Kishida K. 1986. Reproductive cycle, growth and migration of red mullet, Upeneus bensasi in Tosa Bay, South-Western Japan // Bull. Nansei Reg. Fish. Res. Lab. № 20. P. 39–57.
  22. 22. Hou G., Zhang H., Wang J. et al. 2021. Stock assessment of 19 Perciformes in the Beibu Gulf, China, using a length-based Bayesian biomass method // Front. Mar. Sci. V. 8. Article 731837. https://doi.org/10.3389/fmars.2021.731837
  23. 23. Ikeda T., Mito S. 1988. Pelagic fish eggs // An atlas of the early stage fishes in Japan. Tokyo: Tokai Univ. Press. P. 999–1083.
  24. 24. İşmen A. 2006. Growth and reproduction of Por’s goatfish (Upeneus pori Ben-Tuvia & Golani, 1989) in İskenderun Bay, the eastern Mediterranean // Turk. J. Zool. V. 30. № 1. P. 91–98.
  25. 25. Jin Y., Liu Z.-l., Yan L.-p. et al. 2020. Maturity of hairtail varies with latitude and environment in the East China Sea // Mar. Coast. Fish. V. 12. № 6. P. 395–403. https://doi.org/10.1002/mcf2.10132
  26. 26. Li Y.H., Wu C.C., Yang J.S. 2000. Comparative ultrastructural studies of the zona radiata of marine fish eggs in three genera in Perciformes // J. Fish Biol. V. 56. № 3. P. 615–621. https://doi.org/10.1006/jfbi.1999.1178
  27. 27. Luo Z., Yi M., Yang X. et al. 2024. Mitochondrial genome analysis reveals phylogenetic insights and gene rearrangements in Parupeneus (Syngnathiformes: Mullidae) // Front. Mar. Sci. V. 11. Article 1395579. https://doi.org/10.3389/fmars.2024.1395579
  28. 28. Nash C.M., Lungstrom L.L., Hughes L.C., Westneat M.W. 2022. Phylogenomics and body shape morphometrics reveal recent diversification in the goatfishes (Syngnatharia: Mullidae) // Mol. Phylogenet. Evol. V. 177. Article 107616. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2022.107616
  29. 29. Pavlov D.A., Emel’yanova N.G., Luong Thi Bich Thuan, Vo Thi Ha. 2014. Reproduction of freckled goatfish Upeneus tragula (Mullidae) in the coastal zone of Vietnam // J. Ichthyol. V. 54. № 10. P. 893–904. https://doi.org/10.1134/S0032945214100129
  30. 30. Pauly D. 1984. Fish population dynamics in tropical waters: a manual for use with programmable calculators // ICLARM Stud. Rev. V. 8. 325 p.
  31. 31. Ramadan M.A., El-Halfawy M.M. 2014. Ovarian maturation and spawning season of Por’s goatfish Upeneus pori (Mullidae) from Mediterranean Sea, Egypt // J. Ichthyol. V. 54. № 10. P. 905–912. https://doi.org/10.1134/S0032945214100154
  32. 32. Randall J.E., Bauchot M.L., Guézé P. 1993. Upeneus japonicus (Houttuyn), a senior synonym of the japanese goatfish U. bensasi (Temminck et Schlegel) // Jpn. J. Ichthyol. V. 40. № 3. P. 301–305. https://doi.org/10.11369/jji1950.40.301
  33. 33. Rochet M.-J., Marty L. 2016. Effects of fishing on the population // Fish reproductive biology: implications for assessment and management. Oxford: Blackwell Publ. P. 188–225. https://doi.org/10.1002/9781118752739.ch4
  34. 34. Sabrah M.M. 2006. Population dynamics Upeneus japonicus (Houttuyn, 1782), family: Mullidae, from the Gulf of Suez, Red Sea, Egypt // Egypt. J. Aquat. Res. V. 32. № 1. P. 334–345.
  35. 35. Sabrah M.M. 2007. Some biological aspects of the red mullet, Upeneus japonicus (Houttuyn, 1782), from the Gulf of Suez, Red Sea, Egypt // Egypt. J. Aquat. Res. V. 33. № 2. P. 222–234.
  36. 36. Sabrah M.M., Heneish R.A., Alwany M.E. et al. 2017. Sexual maturity, spawning activity, sex ratio and fecundity of two Mullidae species dwelling the Gulf of Suez, Red Sea // Egypt. J. Aquat. Res. V. 43. № 1. P. 83–91. https://doi.org/10.1016/j.ejar.2016.04.007
  37. 37. Sparre P., Venema C.S. 1998. Introduction to tropical fish stock assessment. Pt. I: Manual // FAO Fish. Tech. Pap. Rev. № 306/1. Rev. 2. 407 p.
  38. 38. Takeuchi A., Higuchi T., Watanabe S. et al. 2021. Several possible spawning sites of the Japanese eel determined from collections of their eggs and preleptocephali // Fish. Sci. V. 87. № 3. P. 339–352. https://doi.org/10.1007/s12562-021-01519-4
  39. 39. Uiblein F., Gledhill D.C. 2015. A new goatfish of the genus Upeneus (Mullidae) from Australia and Vanuatu, with interand intraspecific comparisons // Mar. Biol. Res. V. 11. № 5. P. 475–491. https://doi.org/10.1080/17451000.2014.958088
  40. 40. Uiblein F., Heemstra P.C. 2010. A taxonomic review of the Western Indian goatfishes of the genus Upeneus (Family Mullidae), with descriptions of four new species // Smithiana Bull. V. 11. P. 35–71.
  41. 41. Uiblein F., Gledhill D.C., Pavlov D.A. et al. 2019. Three new goatfishes of the genus Upeneus (Mullidae) from the Indo-Pacific, with a redescription of colour patterns in U. margarethae // Zootaxa. V. 4683. № 2. P. 151–196. https://doi.org/10.11646/zootaxa.4683.2.1
  42. 42. Uiblein F., Gouws G., Lisher M., Malauene B.S. 2020. Upeneus floros, a new goatfish from South Africa and Mozambique, with updated taxonomic accounts for U. guttatus and U. pori and a key to Western Indian Ocean Upeneus species (Mullidae) // Zootaxa. V. 4834. № 4. P. 523–555. https://doi.org/10.11646/zootaxa.4834.4.3
  43. 43. Uiblein F., Williams J.T., Bailly N. et al. 2024. Four new goatfishes (Upeneus, Mullidae, Mulliformes) from the Asian Indo-Pacific with a list of valid goatfish species and remarks on goatfish diversity // Cybium. V. 48. № 2. P. 135–160. https://doi.org/10.26028/cybium/2024-001
  44. 44. Wang X.H., Qiu Y.S., Zhu G.P. et al. 2011. Length-weight relationships of 69 fishes in the Beibu Gulf, northern South China Sea // J. Appl. Ichthyol. V. 27. № 3. P. 959–961. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2010.01624.x
  45. 45. Weatherley A.H., Gill H.S. 1987. The biology of fish growth. London: Acad. Press, 443 p.
  46. 46. Xu M., Liu Z., Wang Y. et al. 2022. Larval spatiotemporal distribution of six fish species: implications for sustainable fisheries management in the East China Sea // Sustainability. V. 14. № 22. Article 14826. https://doi.org/10.3390/su142214826
  47. 47. Yagi M., Yamada M., Shimoda M. et al. 2015. Length–weight relationships of 22 fish species from the East China Sea // J. Appl. Ichthyol. № 31. № 1. P. 252–254. https://doi.org/10.1111/jai.12648
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека