References

1. 1. Болотовский А.А. 2018. Роль трийодтиронина в индивидуальном развитии и формировании фенотипа плотвы Rutilus rutilus (L) и леща Abramis brama (L): Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Борок: ИБВВ РАН, 24 с.
2. 2. Болотовский А.А., Левин Б.А. 2011. Влияние темпа развития на формулу глоточных зубов леща Abramis brama (L.): экспериментальные данные // Онтогенез. Т. 42. № 3. С. 172–177.
3. 3. Герасимов Ю.В., Смирнова Е.С., Левин Б.А. 2012. Роль тиреоидных гормонов в формировании поведенческих реакций у молоди плотвы Rutilus rutilus (L.) (Cyprinidae) // Биология внутр. вод. № 1. С. 84–93.
4. 4. Есин Е.В., Шульгин Е.В., Павлова Н.С., Заенко Д.В. 2023. Роль тиреоидных гормонов в адаптации толынов рода Salvelinus (Salmonidae) к вулканическому загрязнению местообитаний // Вопр. ихтиологии. Т. 63. № 6. С. 731–739. https://doi.org/10.31857/S0042875223060036
5. 5. Лакин Г.Ф. 1973. Биометрия. М.: Высш. шк., 343 с.
6. 6. Моисеева Е.Б. 1989. Дифференцировка тиреотропных клеток и гипофизаторно-тиреоидные отношения у молоди кефали Liza sallens // Биология моря. № 1. С. 32–39.
7. 7. Павлов Д.С. 1979. Биологические основы управления поведением рыб в потоке воды. М.: Наука, 319 с.
8. 8. Павлов Д.С., Лупань А.Н., Костин В.В. 2007. Механизм похватной миграции молоди речных рыб. М.: Наука, 213 с.
9. 9. Павлов Д.С., Костин В.В., Пономарева В.Ю. 2010. Поведенческая дифференциация сеголеток черноморской кумжи Salmo trutta labrax: реореакция в год, предшествующий смогификации // Вопр. ихтиологии. Т. 50. № 2. С. 251–261.
10. 10. Павлов Д.С., Павлов Е.Д., Ганжа Е.В., Костин В.В. 2020a. Изменение реореакции и содержания тиреоидных гормонов в крови молоди радужной форели Oncorhynchus mykiss при голодании // Вопр. ихтиологии. Т. 60. № 2. С. 229–234. https://doi.org/10.31857/S0042875220020186
11. 11. Павлов Д.С., Паршина В.Ю., Костин В.В., Прозоров Д.А. 2020b. Сравнение экспериментальных методов оценки мотивационной компоненты реореакции рыб (соотношения типов реореакции) // Вопр. ихтиологии. Т. 60. № 4. С. 478–487. https://doi.org/10.31857/S0042875220040189
12. 12. Павлов Д.С., Паршина В.Ю., Костин В.В. 2022. Реореакция Danio rerio (Cyprinidae): влияние скорости потока и доступности зоны без течения // Вопр. ихтиологии. Т. 62. № 5. С. 634–644. https://doi.org/10.31857/S0042875222050150
13. 13. Павлов Е.Д., Павлов Д.С., Ганжа Е.В. и др. 2018. Влияние тиомочевчины на поведение анабаса Anabas testudineus в потоке воды // Вопр. ихтиологии. Т. 58. № 5. С. 584–588. https://doi.org/10.1134/S0042875218050181
14. 14. Павлов Е.Д., Звездин А.О., Павлов Д.С. 2019. Воздействие тиомочевчины на миграционную активность анабаса Anabas testudineus и потребление им корма // Вопр. ихтиологии. Т. 59. № 5. С. 606–611. https://doi.org/10.1134/S0042875219050163
15. 15. Павлов Е.Д., Павлов Д.С., Ганжа Е.В. и др. 2020. Воздействие мочевины и тиомочевчины на миграционную активность анабаса Anabas testudineus // Вопр. ихтиологии. Т. 60. № 6. С. 682–688. https://doi.org/10.31857/S0042875220060053
16. 16. Павлов Е.Д., Ганжа Е.В., Павлов Д.С. 2022. Уровень тиреоидных и половых стерильных гормонов у горбуши Oncorhynchus garbuscha в морской и пресноводный период перестовой миграции // Вопр. ихтиологии. Т. 62. № 3. С. 356–363. https://doi.org/10.31857/S004287522203016X
17. 17. Павлова Н.А., Болотовский А.А., Левин Б.А., Неполицкая В.А. 2019. Влияние трийодтиронина на стратегии исследовательского поведения трехистой колюшки Gasterosteus aculeatus L. (Gasterostelidae: Osteichthyes) // Биология внутр. вод. № 4. Вып. 2. С. 102–104. https://doi.org/10.1134/S0320965219060111
18. 18. Пономарева В.Ю., Павлов Д.С., Костин В.В. 2017. Разработка и апробирование методики исследования соотношения типов реореакции рыб в кольцевом гидродинамическом лотке // Биология внутр. вод. № 1. С. 100–108. https://doi.org/10.7868/S0320965217010156
19. 19. Bagci E., Heijlen M., Vergauwen L. et al. 2015. Deiodinase knockdown during early zebrafish development affects growth, development, energy metabolism, motility and phototransduction // PLOS ONE. V. 10. № 4. Article e0123285. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0123285
20. 20. Baggerman B. 1962. Some endocrine aspects of fish migration // Gen. Comp. Endocrinol. V. 1. Suppl. 1. P. 188–205. https://doi.org/10.1016/0016-6480 (62)90091-6
21. 21. Bianco A.C. 2013. Cracking the code for thyroid hormone signaling // Trans. Am. Clin. Climatol. Assoc. V. 124. P. 26–35.
22. 22. Biddiscombe S., Idler D.R. 1983. Plasma levels of thyroid hormones in sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) decrease before spawning // Gen. Comp. Endocrinol. V. 52. № 3. P. 467–470. https://doi.org/10.1016/0016-6480 (83)90187-9
23. 23. Björnsson B.T., Stefansson S.O., McCormick S.D. 2011. Environmental endocrinology of salmon smoltification // Gen. Comp. Endocrinol. V. 170. № 2. P. 290–298. https://doi.org/10.1016/j.ygcen.2010.07.003
24. 24. Blanton M.L., Specker J.L. 2007. The hypothalamic-pituitary-thyroid (HPT) axis in fish and its role in fish development and reproduction // Crit. Rev. Toxicol. V. 37. № 1–2. P. 97–115. https://doi.org/10.1080/10408440601123529
25. 25. Borisov V., Shkil F. 2024. Effects and phenotypic consequences of transient thyrotoxicosis and hypothyroidism at different stages of zebrafish Danio rerio (Teleostei: Cyprinidae) skeleton development // Anat. Rec. P. 1–25. https://doi.org/10.1002/ar.25592
26. 26. Brent G.A. 2012. Mechanisms of thyroid hormone action // J. Clin. Invest. V. 122. № 9. P. 3035–3043. https://doi.org/10.1172/JCI60047
27. 27. Brown D.D. 1997. The role of thyroid hormone in zebrafish and axolotl development // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 94. № 24. P. 13011–13016. https://doi.org/10.1073/pnas.94.24.13011
28. 28. Castonguay M., Dutil J.-D., Audet C., Miller R. 1990. Locomotor activity and concentration of thyroid hormones in migratory and sedentary juvenile American eels // Trans. Am. Fish. Soc. V. 119. № 6. P. 946–956. https://doi.org/10.1577/1548-8659 (1990)1192.3.CO;2
29. 29. Cheng S.-Y., Leonard J.L., Davis P.J. 2010. Molecular aspects of thyroid hormone actions // Endocr. Rev. V. 31. № 2. P. 139–170. https://doi.org/10.1210/er.2009-0007
30. 30. Clark T.D., Sandblom E., Jutfelt F. 2013. Aerobic scope measurements of fishes in an era of climate change: respirometry, relevance and recommendations // J. Exp. Biol. V. 216. № 15. P. 2771–2782. https://doi.org/10.1242/jeb.084251
31. 31. Crane H.M., Pickford D.B., Hutchinson T.H., Brown J.A. 2005. Effects of ammonium perchlorate on thyroid function in developing fathead minnows, Pimephales promelas // Environ. Health Perspect. V. 113. № 4. P. 396–401. https://doi.org/10.1289/ehp.7333
32. 32. Cyr D.G., Eales J.G. 1988. Influence of thyroidal status on ovarian function in rainbow trout, Salmo gairdneri // J. Exp. Zool. V. 248. № 1. P. 81–87. https://doi.org/10.1002/jez.1402480110
33. 33. De Leo S., Lee S.Y., Braverman L.E. 2016. Hyperthyroidism // Lancet. V. 388. № 10047. P. 906–918. https://doi.org/10.1016/S0140-6736 (16)00278-6
34. 34. Deal C.K., Volkoff H. 2020. The role of the thyroid axis in fish // Front. Endocrinol. V. 11. Article 596585. https://doi.org/10.3389/fendo.2020.596585
35. 35. Eliason E.J., Farrell A.P. 2015. Oxygen uptake in Pacific salmon Oncorhynchus spp.: when ecology and physiology meet // J. Fish Biol. V. 88. № 1. P. 359–388. https://doi.org/10.1111/jfb.12790
36. 36. Elsalini O.A., Rohr K.B. 2003. Phenylthiourea disrupts thyroid function in developing zebrafish // Dev. Genes Evol. V. 212. № 12. P. 593–598. https://doi.org/10.1007/s00427-002-0279-3
37. 37. Esin E.V., Markevich G.N., Shulgina E.V. et al. 2024. Differences in energy storage in sympatric salmonid morphs with contrasting lifestyles // Evol. Biol. V. 51. № 3. P. 384–394. https://doi.org/10.1007/s11692-024-09641-8
38. 38. Fetter E., Baldauf L., Da Fonte D.F. et al. 2015. Comparative analysis of goitrogenic effects of phenylthiourea and methimazole in zebrafish embryos // Reprod. Toxicol. V. 57. P. 10–20. https://doi.org/10.1016/j.reprotox.2015.04.012
39. 39. Gereben B., Zavacki A.M., Ribich S. et al. 2008. Cellular and molecular basis of deiodinase-regulated thyroid hormone signaling // Endocr. Rev. V. 29. № 7. P. 898–938. https://doi.org/10.1210/er.2008-0019
40. 40. Guo C., Ito S., Yoneda M. et al. 2021. Fish specialize their metabolic performance to maximize bioenergetic efficiency in their local environment: prospective comparison between two stocks of Pacific chub mackerel (Scomber japonicus) // Front. Mar. Sci. V. 8. Article 613965. https://doi.org/10.3389/fmars.2021.613965
41. 41. Heilesen R., Scheffler F.B., Byrge C.G. et al. 2024. Assessing metabolic rates in zebrafish using a 3D-printed intermittent-flow respirometer and swim tunnel system // Biol. Open. V. 13. № 6. Article bio060375. https://doi.org/https://doi.org/10.1242/bio.060375
42. 42. Holzer G., Laudet V. 2013. Thyroid hormones and postembryonic development in amniotes // Curr. Top. Dev. Biol. V. 103. P. 397–425. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-385979-2.00014-9
43. 43. Holzer G., Laudet V. 2015. Thyroid hormones: a triple-edged sword for life history transitions // Curr. Biol. V. 25. № 8. P. R344–R347. https://doi.org/10.1016/j.cub.2015.02.026
44. 44. Holzer G., Besson M., Lambert A. et al. 2017. Fish larval recruitment to reefs is a thyroid hormone-mediated metamorphosis sensitive to the pesticide chlorpyrifos // eLife. V. 6. Article e27595. https://doi.org/10.7554/eLife.27595
45. 45. Hutchison M.J., Iwata M. 1998. Effect of thyroxine on the decrease of aggressive behavior of four salmonids during the parr–smolt transformation // Aquaculture. V. 168. № 1–4. P. 169–175. https://doi.org/10.1016/S0044-8486 (98)00347-0
46. 46. Hvas M. 2022. Swimming energetics of Atlantic salmon in relation to extended fasting at different temperatures // Conserv. Physiol. V. 10. № 1. Article coac037. https://doi.org/10.1093/conphys/coac037
47. 47. Johnston M.E., Kelly J.T., Lindvall M.E. et al. 2017. Experimental evaluation of the use of vision and barbels as references for rheotaxis in green sturgeon // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. V. 496. P. 9–15. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2017.04.002
48. 48. Lema S.C. 2020. Hormones, developmental plasticity, and adaptive evolution: endocrine flexibility as a catalyst for ‘plasticity-first’ phenotypic divergence // Mol. Cell. Endocrinol. V. 502. Article 110678. https://doi.org/10.1016/j.mce.2019.110678
49. 49. Leonard J.B.K., Iwata M., Ueda H. 2001. Seasonal changes of hormones and muscle enzymes in adult lacustrine masu (Oncorhynchus masou) and sockeye salmon (O. nerka) // Fish Physiol. Biochem. V. 25. № 2. P. 153–163. https://doi.org/10.1023/A:1020512105096
50. 50. Little A.G., Kunisue T., Kannan K., Seebacher F. 2013. Thyroid hormone actions are temperature-specific and regulate thermal acclimation in zebrafish (Danio rerio) // BMC Biol. V. 11. Article 26. https://doi.org/10.1186/1741-7007-11-26
51. 51. Lucas J., Schouman A., Lyphout L. et al. 2014. Allometric relationship between body mass and aerobic metabolism in zebrafish Danio rerio // J. Fish Biol. V. 84. № 4. P. 1171–1178. https://doi.org/10.1111/jfb.12306
52. 52. McCormick S.D. 2001. Endocrine control of osmoregulation in teleost fish // Am. Zool. V. 41. № 4. P. 781–794. https://doi.org/10.1093/icb/41.4.781
53. 53. McCormick S.D. 2012. Smolt physiology and endocrinology // Fish Physiol. V. 32. P. 199–251. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-396951-4.00005-0
54. 54. McKenzie D.J. 2011. Energetics of fish swimming // Encyclopedia of fish physiology: from genome to environment. V. 3. London et al.: Acad. Press. P. 1636–1644. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-374553-8.00151-9
55. 55. McMenamin S.K., Parichy D.M. 2013. Metamorphosis in teleosts // Curr. Top. Dev. Biol. V. 103. P. 127–165. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-385979-2.00005-8
56. 56. Mukhi S., Patino R. 2007. Effects of prolonged exposure to perchlorate on thyroid and reproductive function in zebrafish // Toxicol. Sci. V. 96. № 2. P. 246–254. https://doi.org/10.1093/toxsci/kfm001
57. 57. Norris D.O., Carr J.A. 2021. The hypothalamus-pituitary-thyroid (HPT) axis of mammals // Vertebrate endocrinology. London et al.: Acad. Press. P. 205–230. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-820093-3.00006-X
58. 58. Pavlov D.S., Kostin V.V., Zvezdin A.O., Ponomareva V.Yu. 2010. On methods of determination of the rheoreaction type in fish // J. Ichthyol. V. 50. № 11. P. 977–984. https://doi.org/10.1134/S0032945210110020
59. 59. Pavlov D.S., Pavlov E.D., Kostin V.V., Ganzha E.V. 2022. Influence of water temperature on thyroid hormones and on the movement behavior of juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in water flow // Environ. Biol. Fish. V. 105. № 12. P. 1989–2000. https://doi.org/10.1007/s10641-022-01336-3
60. 60. Prazdnikov D.V., Shkil F.N. 2023. The role of thyroid hormones in the development of coloration of two species of Neotropical cichlids // J. Exp. Biol. V. 226. № 14. Article jeb245710. https://doi.org/10.1242/jeb.245710
61. 61. Roux N., Miura S., Dussenne M. et al. 2023. The multi-level regulation of clownfish metamorphosis by thyroid hormones // Cell Rep. V. 42. № 7. Article 112661. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2023.112661
62. 62. Sachs L.M., Campinho M.A. 2019. Editorial: the role of thyroid hormones in vertebrate development // Front. Endocrinol. V. 10. Article 863. https://doi.org/10.3389/fendo.2019.00863
63. 63. Salis P., Roux N., Huang D. et al. 2021. Thyroid hormones regulate the formation and environmental plasticity of white bars in clownfishes // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 118. № 23. Article e2101634118. https://doi.org/10.1073/pnas.2101634118
64. 64. Schmidt F., Schnurr S., Wolf R., Braunbeck T. 2012. Effects of the anti-thyroidal compound potassium-perchlorate on the thyroid system of the zebrafish // Aquat. Toxicol. V. 109. № 19. P. 47–58. https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2011.11.004
65. 65. Shkil F.N., Kapitanova D.V., Borisov V.B. et al. 2012. Thyroid hormone in skeletal development of cyprinids: effects and morphological consequences // J. Appl. Ichthyol. V. 28. № 3. P. 398–405. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2012.01992.x
66. 66. Warner A., Mittag J. 2012. Thyroid hormone and the central control of homeostasis // J. Mol. Endocrinol. V. 49. № 1. P. R29–R35. https://doi.org/10.1530/JME-12-0068
67. 67. Youngson A.F., Webb J.H. 1993. Thyroid hormone levels in Atlantic salmon (Salmo salar) during the return migration from the ocean to spawn // J. Fish Biol. V. 42. № 2. P. 293–300. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1993.tb00329.x
68. 68. Zydlewski G.B., Haro A., McCormick S.D. 2005. Evidence for cumulative temperature as an initiating and terminating factor in downstream migratory behavior of Atlantic salmon (Salmo salar) smolts // Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 62. № 1. P. 68–78. https://doi.org/10.1139/f04-179